一．材料
所需液體：Hanks液、低糖DMEM液、高糖DMEM液、胰酶消化液、雙抗液、碳酸氫鈉液、鹽酸液。
試劑Trypsin,SDS,DMEM均購于SigmaChemicalCo.小牛血清購于杭州四季青生物制品有限公司，其余均為國產分析純。
取鼠：標準SD大鼠，鼠盆用棉鋪好，取鼠。
物品：白大衣、飯盒
小剪子、小鑷子（4套）（一套剪皮膚、一套開胸取心，一套剔除心緣纖維組織，一套剪碎心臟）
瓶皿（2套）
250ml燒杯3個
500ml燒杯1個，用作廢液缸。
50ml燒杯3個（剪碎心肌組織，最后配液）
三角燒杯（50ml） 小轉子（小轉子，酒精擦，雙蒸水沖后，再把酒精徹底沖掉后用三角燒杯高壓）
離心管及帽（12-14個），兩個試管
吸管（5~8個）大鑷子（兩把，持物，例夾棉球等）
臺面：磁力攪拌器、紗布（事先用于托盤裝0.1％新潔爾滅浸泡）、試管架、泡沫塑料板、五個針頭（不用消毒）75％酒精棉球及碘酒（消毒棉球，泡酒精、碘酒）大鑷子兩把（一把夾棉球，一把取鼠）、3個250ml燒瓶（一個裝一蒸水，一個裝新潔爾滅，另一為空的備用）1個500ml燒瓶（廢液缸）、溫度計、PH試紙（事先調PH值）、酒精燈、打火機/火柴、載玻片（5-10個）、注射器5ml6個（胰酶、DMEM、小牛血清）1ml2個（雙抗液）20ml備用2個、微量加樣器1000ml及500ml
以上物品均用紫外線照30分鐘。
另外準備手套、帽子、口罩、24孔培養板、離心機、未凍藥品及DMEM、HCL、NaHCO3、小牛血清。
事先把顯微鏡、離心機、磁力攪拌器電源插好。檢查酒精燈是否有酒精，碘酒和酒精棉球是否夠用。先把物品遞入，后穿大衣、帽子和口罩。然后把酒精燈打開，把瓶皿擺好，再用一個瓶皿裝酒精棉球。
二．培養方法：
事先檢查顯微鏡、磁力攪拌器及離心機是否好用，提前三小時把小牛血清、胰酶、抗生素拿出來化開。其余未凍藥品也提前20分鐘拿出來緩和一下。新潔爾滅（0.1％）泡紗布（用10ml5％的新潔爾滅加水至500ml即得），消毒地面（1：500的84液），用酒精棉球擦拭臺面后把物品擺放好，開紫外線燈照30分鐘后開鼓風機吹至實驗結束。
具體方法為：
1.把兩個5ml注射器分別插入DMEM和胰酶中，分別向兩個圓皿中加入5ml的DMEM培養液。用一把大鑷子從鼠盆里取出一只生后2~3天的SD大鼠，放入0.1％新潔爾滅浸泡一下后拿出放在泡沫板上，用針頭把鼠固定（位置擺正），用另一把大鑷子取碘酒棉球擦皮膚，再用酒精棉球脫碘，取一把小剪子及小鑷子開皮，充分撕拉開，再用酒精棉球消毒，后換另一把小剪子和鑷子在劍突處正中線稍偏左開胸取心。
2.取出的心放在剛才準備的一個裝有DMEM的圓皿中再取下一只。重復以上過程。（鼠全部殺死后，把取鼠鑷及泡沫板、新潔爾滅缸等拿出臺面。消毒、清潔，鋪紗布、換手套。
3．用第三副剪子和鑷子把圓皿中的心臟周邊的血凝及纖維組織剔除掉，放在另一個預先裝好DMEM的圓皿中。抽取5ml的胰酶，然后將其中少許放入50ml的小燒杯中，大部分倒入三角燒瓶中。用第四副剪子將燒杯中的心臟剪成1mm3的碎塊，倒入三角燒瓶中（可用剪刀刮入），再用剩余胰酶刷凈燒杯。
4．把溫度計和三角燒杯放入250ml燒瓶中，（事先調好水量，多會沒過三角燒杯，少溫度會不均勻）。打開磁力攪拌器電源，調溫度（使-緩慢加到34~35℃）和轉速（轉速不可過快，否則會打碎細胞，基本上標志為平行）。一定要注意監控。
5．溫度達到34℃時開始計時，第一次為10分鐘，以后可為8分鐘，事情況而定。在此期間，在試管架上擺上5、6個離心管，標上1、1，2、2。其中在1號兩管事先加入DMEM液各2毫升
6．10分鐘后，把三角燒瓶取下，磁力攪拌器關上，用一個吸管輕輕吹打（使消化下來的細胞徹底從組織團快上掉下來），這個吸管（1）用后固定放在一個離心管中，以后每次消化后取下都用其吹打幾下，第一次上清棄去，然后向兩個1號管分別倒入2ml上清（盡量不要把組織倒出，也不要剩液太多，以免消化下的細胞重復消化造成損傷），用另一個吸管（2）混勻配平兩個管（即兩個管水平高度相同），輕輕吹打，以免損壞細胞。
7．接著把這兩個離心管放入離心機中，調10分鐘，800或1000轉，打開關。
8．同時向三角燒瓶中加入5ml胰酶，繼續消化8分鐘，注意控制溫度。此時向兩個2號管中分別加入2mlDMEM液。
9．取下三角燒瓶，仍用1號吸管吹打，后靜置片刻向兩個2號管分別倒入2毫升的上清，取出兩個離心后的1號管，把上清液沿細胞貼壁一方慢慢倒掉，后向其中一管加入4ml的DMEM液，用2號吸管取少量液體加入另一個離心管中，把管底的沉淀細胞洗下來，把液體全部移入其中一管，三個管（1個1號管，兩個2號管）配平，放入離心管中，離心十分鐘。同時仍加5ml的胰酶，放入三角燒瓶中，繼續消化（注意控制溫度，達34℃時計時）。
10．消化到4次左右，吹打均勻后，吸一滴滴在載玻片上，拿到鏡下觀察消化情況，決定消化次數。
11．離心2次的吸管，放在試管架上，待離心過程全部完事后，把各管上清液倒掉，在各管加上3ml（不用精確，大致這樣）DMEM液，記住共加入多少DMEM液的量，換吸管（3號）把各管底細胞塊吸下吹打均勻后，移入50ml燒杯中，然后用注射器抽取余量的DMEM加入燒杯中，加入小牛血清及抗生素，換吸管（4號）吹打均勻。
12．取出24孔培養板，一個人吹打，另一個人用加樣器加藥。封蓋時過火，蓋上蓋，放在CO2孵箱。24小時后觀察是否貼壁。（生物秀實驗頻道www.bbioo.com）
（24孔板，每孔最多加2ml，一般加液時每孔加1~1.5ml）
三．討論
乳鼠心肌細胞屬于原代生長細胞，培養過程較為繁瑣。文獻上有多種濃度胰酶消化方法，我們在試驗中摸索到0.06％濃度的胰酶對細胞損害較小，比起一些文獻記載的0.15％濃度有一定的優越性，但這個濃度消化所需時間較長，所以我們又采取多次反復低濃度消化的方法，每次消化一些后，用吸管抽取出上清液，離心所得即為心肌細胞。利用心肌細胞和成纖維細胞貼壁時間的不同,采用差速貼壁1h,除去成纖維細胞，達到純化的目的。成纖維細胞胞體呈梭型或不規則三角形，中央有卵圓形核，胞質突起，生長時呈放射狀。很好和心肌細胞鑒別。
心肌細胞剛接種時形狀為圓形或橢圓形，大約在一天左右基本貼壁，此時細胞伸出偽足，偽足在鏡下為纖維狀條索，細胞胞體則呈現不規則形狀，如多角形，部分細胞有聚集傾向，細胞搏動效果較好，DMEM培養基在初始培養時為深紅色，兩天后變為淡黃色，應該是營養成分下降的表現，也說明細胞生長狀況良好。我們也參考了一些國外文獻的培養方法加以補充。
我們也拍攝了很多細胞的圖片，效果很清晰，但目前沒有在手頭上，以后有機會補上。
四．參考文獻
1.WangHX,ZhangWM,ShengJZ,WongTM.HighcarbacholincreasestheelectricallyinducedItransientinthesingleisolatedventricularmyocyteofrats.EurJPharmacol,1997；319：91-9
2.AnimalcellculturemethodseditedbyJennieP.MatherandDavidBarnes.--California:AcademicPress,c1998.--xiv,368p.24cmSBN0124800408:CNY619.26
|
